組織細胞固定液固定方法有物理固定和化學固定兩類，物理固定可采用空氣干燥（血涂片）、驟冷（在液氮中迅速冷凍）或微波固定等；化學固定有浸潤法（immersion method）和灌流法（perfusion method）。灌流法適用于動物實驗中對缺氧敏感的器官，如神經系統和胃腸等取材。

 

組織細胞固定液固定的方法 

    1．浸泡法 

這是zui常用的固定法，將取好的組織直接浸泡在固定液中，固定的時間一般在2～24h它適用于動物標本、尸檢標本及臨床活檢標本等。 

    2．蒸氣法 

    比較小而薄的標本可用鋨酸或甲醛蒸氣固定。主要用于血液、細胞涂片以及某些薄膜組織的固定。具體方法：在一有蓋培養皿內滴人1％一2％鋨酸水溶液3滴，將涂片放人其中，固定30s至lmin左右，立即水洗后進行染色。 

    3.注射、灌注固定法 

    主要適用于動物實驗標本的固定。將固定液注入血管，以達到充分的固定。經血管分支到達整個組織或全身 

(1)局部灌注固定 固定肺組織可將固定液從氣管或支氣管注入，注入速度不要太快，用力均勻，注入量適當，以免脹破肺泡。固定眼球組織可從眼后房注人固定液。固定肝、腎組織則可從肝、腎動脈注入固定液，同時切斷其靜脈使得血液排出。腦組織的固定，必須先麻醉動物，分離頸動脈，注射器的針尖向著頭部的方向注入固定液。 

(2)全身灌注固定 較大的動物往往采取輸液方法，將固定液從一側頸總動脈或股動脈輸入，將另一側相應的靜脈切開放血。固定液的輸入量因動物而異，兔、貓約500～1000ml，猴、狗約1000—2000ml。 

    4．微波固定法 

近幾年來微波固定法一直可見報道。經微波固定的組織具有收縮較小、核膜清晰、染色質均勻、分辨清晰等特點，但必須嚴格控制微波固定的時間和溫度。